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專題:轉(zhuǎn)染(transfection)--轉(zhuǎn)染試劑的選擇

更新時間:2013-07-08 瀏覽次數(shù):2055

下面我們?yōu)榇蠹姨峁┮恍┏S弥|(zhì)體試劑的適用細(xì)胞系信息以及轉(zhuǎn)染FAQs:
 
1.  promega公司
 
Promega轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品適合于人HeLa,Hep G2,293,K562,Jurkat;猴COS-7,CV-1;小鼠NIH3T3;倉鼠BHK,CHO;大鼠PC12;昆蟲S19等等細(xì)胞系的RNAi轉(zhuǎn)染。詳情請參閱http://www.promega.com.cn/files/cpxl/zhuanran/zhuanran.htm
 
2.  Invitrogen公司
 
根據(jù)經(jīng)驗(yàn),我公司推薦您使用Invitrogen公司生產(chǎn)的lipofetamine2000試劑盒。適合于Hela,BHK,HEK,COS-7,PC12,NIH3T3等各種常用細(xì)胞系的RNAi轉(zhuǎn)染。詳情請參閱http://invitrogen.com/content.cfm?pageid=4547%20
 
3.  轉(zhuǎn)染FAQs:
 
針對同種陽離子脂質(zhì)體的疑難解答
 
Q1:轉(zhuǎn)染效率低
 
A1:
(1)沒有使用優(yōu)化的陽離子脂質(zhì)體試劑。解決建議:選擇針對您的細(xì)胞類型轉(zhuǎn)染效率可能zui高的陽離子脂質(zhì)體試劑。參見附錄A或(www.invitrogen.com)上“Transfection Collection”中的參考文獻(xiàn)列表。
(2)沒有使用優(yōu)化條件。解決建議:優(yōu)化陽離子脂質(zhì)體試劑和DNA的量。參見第7章優(yōu)化步驟。參見(www.invitrogen.com在Tech-online分子生物學(xué)部分)上的細(xì)胞特異性的轉(zhuǎn)染步驟。
(3)DNA-陽離子脂質(zhì)體試劑復(fù)合物在存在血清條件下形成。解決建議:在復(fù)合體形成時不要使用血清。OPTI-MEM I培養(yǎng)基和DMEM是用于復(fù)合體形成的較好的培養(yǎng)基。如果使用含有血清的培養(yǎng)基進(jìn)行轉(zhuǎn)染,保證在無血清條件形成復(fù)合物。注意:不要將OPTI-MEM I培養(yǎng)基用于LIPOFECTAMINE PLUS試劑或昆蟲細(xì)胞。對于Sf9和Sf21細(xì)胞,Sf-900Ⅱ SFM會得到*結(jié)果。
(4)存在抑制劑。解決建議:不要在用于制備DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物的培養(yǎng)基中使用抗生素,EDTA,檸檬酸鹽,磷酸鹽,RPMI,硫酸軟骨素,透明質(zhì)酸,硫酸葡聚糖或其他硫酸蛋白多糖。
(5)不恰當(dāng)?shù)募?xì)胞密度。解決建議:細(xì)胞密度應(yīng)該在轉(zhuǎn)染時融合度為70%~90%。
(6)轉(zhuǎn)染DNA的啟動子-增強(qiáng)子沒有被宿主細(xì)胞識別。解決建議: 確保轉(zhuǎn)染DNA的啟動子-增強(qiáng)子同目的細(xì)胞類型兼容。
(7)陽離子脂質(zhì)體試劑凍結(jié)。 解決建議:不要使用凍結(jié)的或儲存溫度低于4℃的陽離子脂質(zhì)體試劑。
(8)轉(zhuǎn)染分析的問題。解決建議: 轉(zhuǎn)染分析中加入陽性對照。
(9)質(zhì)粒純化的問題。解決建議: 請核對是否使用轉(zhuǎn)染級的質(zhì)粒純化試劑盒。通常轉(zhuǎn)染級的質(zhì)粒純化試劑盒使用DEAE樹脂而非硅樹脂,并且是用重力流動(過濾)的方法而不是離心技術(shù),因?yàn)闃渲瑤淼奈廴緯?dǎo)致較高的內(nèi)毒素。另一種方法(可用于任何級別的純化試劑盒),是在zui后一步從樹脂柱上洗脫質(zhì)粒后,將溶液置于55℃的水浴上保溫5分鐘。zui后小心地從上至下吸取2/3的溶液(不要碰到底部)使用。這是減少樹脂的交叉污染的方法。
 
 
Q2:細(xì)胞死亡率高。
 
A2:
(1)DNA量太高。 解決建議:作一個劑量-反應(yīng)曲線以確定*的DNA量。在劑量-反應(yīng)轉(zhuǎn)染中加入陽離子脂質(zhì)體試劑,因?yàn)閱为?dú)DNA也會對細(xì)胞生長有一個基礎(chǔ)的影響。參見第7章微調(diào)/優(yōu)化方法。
(2)陽離子脂質(zhì)體試劑量太高。解決建議: 作一個劑量-反應(yīng)曲線以確定*的陽離子脂質(zhì)體試劑的量。在劑量-反應(yīng)轉(zhuǎn)染中加入DNA,因?yàn)閱为?dú)陽離子脂質(zhì)體試劑也只對細(xì)胞生長有一個基礎(chǔ)的影響。參見第7章微調(diào)/優(yōu)化方法。
(3)在轉(zhuǎn)染過程中使用抗菌素。 解決建議:在轉(zhuǎn)染過程中不要使用氯霉素,青霉素或鏈霉素,因?yàn)殛栯x子脂質(zhì)體試劑使細(xì)胞更敏感。
(4)細(xì)胞太少。 解決建議:作一個劑量-反應(yīng)曲線以確定每個轉(zhuǎn)染過程中*的細(xì)胞數(shù)量。根據(jù)您的應(yīng)用所要求的效率調(diào)整細(xì)胞數(shù)量。
(5)在無血清條件下細(xì)胞活性降低。 解決建議:使用OPTI-MEMⅠ培養(yǎng)基。降低或省去在無血清培養(yǎng)基中清洗的次數(shù)。在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用5%到10%的血清。確保在不存在血清的條件下形成復(fù)合物。
(6)陽離子脂質(zhì)體試劑氧化了。 解決建議:不要過分?jǐn)噭踊蛘袷庩栯x子脂質(zhì)體試劑;這可能會形成陽離子脂質(zhì)體試劑的過氧化物。
(7)對于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染,篩選抗生素加入的太快。解決建議: 在加入篩選性抗生素前至少預(yù)留48小時使細(xì)胞表達(dá)抗性基因。
 
Q3:陽離子脂質(zhì)體試劑-DNA復(fù)合物沉淀。注意:在顯微靜下可以在細(xì)胞上觀察到小的顆粒狀顆粒沉淀。這是正常的。此沉淀是否存在并不表明轉(zhuǎn)染效率的高低。
 
A3:
(1)存在過剩的EDTA。 解決建議:使用DNA水溶液,如果是在TE中,使用濃度<0.3mM的EDTA溶液稀釋DNA。
(2)DNA或陽離子脂質(zhì)體試劑濃度過高。解決建議: 確保陽離子脂質(zhì)體試劑和DNA的濃度不要超過復(fù)合物形成的建議量(參見表5)。
 
Q4: 轉(zhuǎn)染重復(fù)性不好。
 
A4:
(1) 轉(zhuǎn)染時的融合度波動。 解決建議:在不同的轉(zhuǎn)染時報持所有的轉(zhuǎn)染參數(shù)恒定,如融合度,傳代次數(shù)和生長時相等。
(2)在培養(yǎng)中細(xì)胞發(fā)生變化。解決建議: 如果可能,使用來源于經(jīng)選擇轉(zhuǎn)染效率較高亞系的細(xì)胞。如果可能,融化新鮮細(xì)胞。
 
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